4-3-2 تاثیر امواج Wi-Fi بر هورمون تستوسترون و اثر حفاظتی عصاره سنجد بر آن 83
4-3-3 تاثیر امواج Wi-Fi بر بافت بیضه موش و اثر حفاظتی عصاره سنجد بر آن 83
پیشنهادها 85
فهرست منابع و مأخذ
منابع فارسی.. 87
منابع انگلیسی.. 88
Abstract 100
فهرست جدولها
جدول 2-1: لیست وسایل مصرفی.. 37
جدول 2-2: لیست مواد مصرفی.. 38
جدول 2-3: لیست ابزارها و دستگاه های مورد استفاده 39
جـدول 3-1: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) تعداد اسپرمها (میلیون بر میلیلیتر) در گروههای مختلف 42
جـدول 3-2: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) درصد اسپرمهای پیشرونده سریع در گروههای مختلف 44
جـدول 3-3: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) درصد اسپرمهای با حرکت درجا در گروههای مختلف 47
جـدول 3-4: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) درصد اسپرمهای پیشرونده با حرکت آهسته در گروههای مختلف 49
جـدول 3-5: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) درصد اسپرمهای بدون حرکت در گروههای مختلف 52
جـدول 3-6: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) وزن بیضه موشها در گروههای مختلف… 55
جـدول 3-7: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) هورمون تستوسترون در گروههای مختلف… 57
جـدول 3-8: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) تعداد اسپرمها (میلیون بر میلیلیتر) در گروههای مختلف 58
جـدول 3-9: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) درصد اسپرمهای پیشرونده سریع در گروههای مختلف 60
جـدول 3-10: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) درصد اسپرمهای با حرکت درجا در گروههای مختلف 62
جـدول 3-11: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) درصد اسپرمهای پیشرونده با حرکت آهسته در گروههای مختلف 64
جـدول 3-12: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) درصد اسپرمهای بدون حرکت در گروههای مختلف 66
جـدول 3-13: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) وزن بیضه موشها در گروههای مختلف… 68
جـدول 3-14: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) هورمون تستوسترون در گروههای مختلف… 69
جدول 3-15: 71
فهرست نمودارها
نمودار 3-1: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) تعداد اسپرمها در گروههای مختلف… 43
نمودار 3-3: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) درصد اسپرمهای با حرکت درجا در گروههای مختلف 48
نمودار 3-4: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) درصد اسپرمهای پیشرونده با حرکت آهسته در گروههای مختلف 50
نمودار 3-5: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) درصد اسپرمهای بدون حرکت در گروههای مختلف 53
نمودار 3-6: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) وزن بیضه موشها در گروههای مختلف… 56
نمودار 3-7: نمودار باکس- ویسکر (box-and-whisker plots) برای هورمون تستوسترون در گروههای مختلف 57
نمودار 3-8: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) تعداد اسپرمها در گروههای مختلف… 59
نمودار 3-9: نمودار باکس- ویسکر (box-and-whisker plots) برای درصد اسپرمهای پیشرونده سریع در گروههای مختلف… 61
نمودار 3-10: نمودار باکس- ویسکر (box-and-whisker plots) برای درصد اسپرمهای با حرکت درجا در گروههای مختلف… 63
نمودار 3-11: نمودار باکس- ویسکر (box-and-whisker plots) برای درصد اسپرمهای پیشرونده با حرکت آهسته در گروههای مختلف… 65
نمودار 3-12: نمودار باکس- ویسکر (box-and-whisker plots) برای درصد اسپرمهای بدون حرکت در گروههای مختلف… 67
نمودار 3-13: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) وزن بیضه موشها در گروههای مختلف… 68
نمودار 3-14: میانگین و خطای معیار میانگین ( ) هورمون تستوسترون در گروههای مختلف… 70
فهرست شکلها
شکل 1-1: درخت سنجد. 7
شکل 2-1: نمایی از اتاق حیوانات دانشکده علوم پزشکی شیراز. 22
این مطلب را هم بخوانید :
شکل 2-2: دستگاه دسیکاتور. 24
شکل 2-3: دستگاه روتاری.. 25
شکل 2-4: دستگاه پرکولاتور. 26
شکل 2-5: طرز چیدمان موش ها داخل مقید کننده در اطراف مودم Wi-Fi 31
شکل 2-6: تشریح موش صحرایی.. 33
شکل 4-1: تصاویر میکروسکوپی مطالعات بافت شناسی گروه های آزمایشی 1 تا 9. 72
شکل 4-2: تصاویر میکروسکوپی اسمیرهای اسپرم با رنگ آمیزی ائوزین گروه های آزمایشی 1 تا 9. 73
چکیده
در این مطالعه تاثیرات داروی بوسولفان و امواج Wi-Fi را بر روند اسپرماتوژنز، بافت بیضه و هورمون تستسترون موش سفید بزرگ آزمایشگاهی نر از نژاد اسپراگوداولی مورد بررسی قرار گرفت و همچنین از عصاره هیدروالکلی میوه سنجد به عنوان یک داروی محافظت کننده در برابر اثرات بوسولفان و امواج Wi-Fi استفاده شد و به صورت مقایسه ای این مطالعه صورت گرفت.برای انجام این تحقیق 100سر موش سفید بزگ آزمایشگاهی نر با وزن 200-250 گرم انتخاب و در شرایط نوری و غذایی مناسب مورد آزمایش قرار گرفتند. موش ها بر حسب متغیر های تزریق بوسولفان، تابش امواج Wi-Fi و دریافت عصاره سنجد به صورت گاواژ، به طور تصادفی به 10 گروه 10 تایی تقسیم شدند.
گروه 1 به عنوان گروه کنترل حقیقی(هیچ دارو و اشعه ای دریافت نکردند)، گروه 2 به عنوان گروه شم (2ml/kg آب مقطر به صورت گاواژ به مدت 48 روز دریافت کردند)، گروه 3 به عنوان گروه تجربی 1 (2ml/kg عصاره هیدرو الکلی سنجد به صورت گاواژ به مدت 48 روز دریافت کردند)، گروه4 به عنوان گروه تجربی 2(یک دوز 5ml/kg بوسولفان به صورت)Intraperitoneal (Ip)داخل صفاقی) دریافت کردند و سپس به مدت 48 روز آب و غذای روزانه دریافت کردند)، گروه5 به عنوان گروه تجربی 3 (یک دوز5mg/kg بوسولفان به صورت (Ip)داخل صفاقی دریافت کردند و سپس به مدت 48 روز 2ml/kg عصاره سنجد، به صورت گاواژ دریافت کردند) گروه 6 به عنوان گروه تجربی 4 (یک دوز 15mg/kg بوسولفان به صورت Ip دریافت کردند و سپس به مدت 48 روز آب و غذای روزانه دریافت کردند )، گروه 7 به عنوان گروه تجربی 5(یک دوز 15mg/kg بوسولفان به صورت Ip دریافت کردند سپس به مدت 48 روز عصاره هیدرو الکلی سنجد2ml/kg)) به صورت گاواژ در یافت کردند)، گروه 8 به عنوان گروه تجربی 6( موش ها در داخل مقیدکننده(Restrainer) قرار داده و روزانه 4ساعت به مدت 48 روز در معرض تابش اشعه Wi-Fi قرار گرفتند). گروه 9 به عنوان گروه تجربی 7 ( موش ها میزان 2ml/kg عصاره هیدرو الکلی سنجد به صورت گاواژ دریافت نموده سپس موش ها داخل مقیدکننده(Restrainer) قرار داده شدند و روزانه 4ساعت به مدت 48 روز در معرض تابش اشعه Wi-Fi قرار داده شدند)، گروه 10 به عنوان گروه کنترل Wi-Fi (موش ها روزانه به مدت 4 ساعت داخل مقیدکننده(Restrainer) به مدت 48 روز بدون دریافت هیچ تابشی قرار داده شدند.)
در روز 50(48 روز پس از تجویز عصاره و تابش Wi-Fi و 49 روز پس از دادن بوسولفان) کلیه موش ها تحت بی هوشی با کلروفرم قرار گرفتند و در ابتدا خون گیری از قلب صورت گرفت برای اندازه گیری هورمون تستوسترون، سپس موش تشریح شده و از یک سانتی متر انتهایی مجرای دفران چپ اسپرم گیری به عمل آمد و ابتدا وضعیت تحرک سپس شمارش اسپرم ها انجام شد. از اسپرم های مزبور اسمیر تهیه شد که با رنگ ائوزین رنگ آمیزی شدند. بافت بیضه چپ نیز جهت مطالعه بافت شناسی برداشته شدند.
4-3-3- متغیر شماره دو: سهولت استفاده از امکانات سایت.. 72
4-3-4- آزمون سوالات مرتبط با متغیر سهولت استفاده از امکانات سایت.. 73
4-3-5- متغیر شماره سه: رتبه سایت در موتورهای جستجو. 74
4-3-6- آزمون سوالات مرتبط با متغیر رتبه سایت در موتورهای جستجو. 75
4-3-7- متغیر شماره چهار: تبلیغات اینترنتی. 76
4-3-8- آزمون سوالات مرتبط با متغیر تبلیغات اینترنتی. 77
4-4- بررسی تأثیر عوامل جمعیت شناختی. 78
4-4-1- تأثیر جنسیت پاسخگویان. 78
4-4-2- تأثیر وضعیت تأهل پاسخگویان. 79
4-4-3- تأثیر تحصیلات پاسخگویان. 80
4-4-4- تأثیر سابقه خرید اینترنتی پاسخگویان. 82
4-5- رتبهبندی عوامل مؤثر بر خرید اینترنتی افراد 83
فصل پنجم: نتیجهگیری و پیشنهادها
5-1- مقدمه. 86
5-2- مروری بر موضوع تحقیق و روش اجرای آن. 86
5-3- نتایج به دست آمده از تحقیق. 87
5-3-1- نتایج آزمون عوامل مؤثر. 87
5-3-2- نتایج آزمون عوامل جمعیت شناختی. 89
5-3-3- رتبه بندی عوامل مؤثر. 89
5-4- محدودیتها و مشکلات تحقیق. 90
5-5- پیشنهادهای تحقیق. 91
این مطلب را هم بخوانید :
5-5-1- پیشنهادهای کاربردی حاصل از نتایج تحقیق. 91
5-5-2- پیشنهاد برای تحقیقات آتی. 92
پیوست ها و ضمائم 92
منابع و ماخذ 96
چکیده لاتین. 101
فهرست جداول
جدول شماره 2-1- مقایسه تبلیغات اینترنتی و تبلیغات سنتی (گائو، 2002) 40
جدول شماره 2-2- مقایسه اشکال مختلف تبلیغات اینترنتی (گائو ، 2002) 46
جدول شماره 3-1- ارتباط میان مولفههای تحقیق و سوالات پرسشنامه. 59
جدول شماره 3-2- آلفای کرونباخ منتج از سوالات پرسشنامه. 61
جدول شماره 4-1- سطوح معنی داری آزمون کولموگروف اسمیرنوف برای متغیرهای تحقیق. 66
جدول شماره 4-2- جنسیت پاسخگویان. 67
جدول شماره 4-3- وضعیت تاهل پاسخگویان. 67
جدول شماره 4-4- مقطع تحصیلی پاسخگویان. 68
جدول شماره 4-5-سابقه خرید اینترنتی. 68
جدول شماره 4-6- نتایج آزمون سوالات مرتبط با متغیر طراحی سایت.. 70
جدول شماره 4-7- نتایج آزمون تأثیرگذاری متغیر سهولت استفاده از امکانات سایت.. 71
جدول شماره 4-8- نتایج آزمون سوالات مرتبط با متغیر سهولت استفاده از امکانات سایت.. 72
جدول شماره 4-9- نتایج آزمون تأثیرگذاری متغیر رتبه سایت در موتورهای جستجو. 73
جدول شماره 4-10- نتایج آزمون سوالات مرتبط با متغیر رتبه سایت در موتورهای جستجو. 74
جدول شماره 4-11- نتایج آزمون تأثیرگذاری متغیر تبلیغات اینترنتی. 75
جدول شماره 4-12- نتایج آزمون سوالات مرتبط با متغیر تبلیغات اینترنتی. 76
جدول شماره 4-13- نتایج آزمون تأثیرگذاری متغیر جنسیت.. 77
جدول شماره 4-14- نتایج آزمون تأثیرگذاری وضعیت تاهل. 78
جدول شماره 4-15- نتایج آزمون تأثیرگذاری تحصیلات.. 79
جدول شماره 4-16- نتایج آزمون تأثیرگذاری سابقه خرید اینترنتی. 81
جدول شماره 4-17- رتبهبندی متغیرهای تحقیق با استفاده از آزمون فریدمن. 82
جدول شماره 4-18- رتبهبندی متغیرهای تحقیق با استفاده از آزمون فریدمن. 83
جدول شماره 4-17- سطح معنی داری آزمون فریدمن برای رتبه بندی.. 83
جدول شماره 5-1- مرور اجمالی آزمون عوامل تأثیرگذار. 88
جدول شماره 5-2- بررسی تأثیر عوامل جمعیت شناختی. 89
جدول شماره 5-3- رتبهبندی متغیرهای تحقیق. 89
فهرست شکل ها
شکل 1-1- مدل رفتار خریداران اینترنتی از نظرکاتلر (کاتلر، 2003) 7
شکل 1-2- مدل مفهومی تحقیق. 7
شکل 2-1- مقایسه مدل جعبه سیاه و CIP (کاتلر و آرمسترانگ، 1391) 18
شکل 2-2- مدل رفتار خریدار از دیدگاه ویلکی (ویلکی، 2010) 19
شکل 2-3- مدل رفتار خریدار از دیدگاه هاوکینز (هاوکینز، 2009) 20
شکل 2-4- مدل رفتار خریدار از دیدگاه شیفمن (شیفمن، 2011) 22
شکل 2-5- مدل رفتار خریداران اینترنتی از نظرکاتلر (کاتلر، 2003) 23
شکل 2-6- مدل نظری تحقیق. 24
| فهرست نمودارها
| |
| 2-1: میزان بروز بیماری سل در طول 46 سال گذشته در ایران | 41 |
| 4-1: نتایج کشت مثبت | 92 |
| 4-2: منحنی استاندارد | 98 |
| فهرست جداول
| ||
| 2-1: تاکسونومی اعضای کمپلکس توبرکلوزیس | 15 | |
| 2-2: داروهای خط دوم درمان توبرکلوزیس | 32 | |
| 2-3: تخمین موارد ومتوسط میزان بروز سل در جهان در سال2010 | 40 | |
| 2-4: به تفکیک دانشگاههای علوم پزشکی کشور | 42 | |
| 2-5: برخی تغییرات ژنی در سویههای BCG M. bovis | 47 | |
| 3-1: نحوه گزارش میکروسکوپی | 71 | |
| 3-2: مواد تشکیلدهنده بافرتخلیص | 81 | |
| 3-3: مواد تشکیلدهنده محلول PBS x10 | 83 | |
| 3-4: مواد تشکیلدهنده محلول برادفورد | 85 | |
| 3-5: مواد تشکیلدهنده Running Buffer 10% | 86 | |
| 3-6: مواد تشکیلدهنده Coomassie Gel stain | 87 | |
| 3-7: مواد تشکیلدهنده Coomassie Gel Destain | 87 | |
| 3-8: مواد تشکیلدهنده Fixation solution | 87 | |
| 3-9: مواد تشکیلدهنده Stainining solution | 88 | |
| 3-10: مواد تشکیلدهنده ژل 10%,12.5% Separating | 89 | |
| 3-11: مواد تشکیلدهنده ژل Stacking 5% | 89 | |
| 4-1: درصد نمونههای بالینی | 93 | |
| 4-2: نتایج تستهای بیوشیمیایی | 96 | |
| 4-3: نتایج تستهای حساسیت آنتیبیوتیکی و TCH | 97 | |
| فهرست تصاویر | ||
| 2-1: استخوان سـتون فقرات بدشـکل در مومیایی، بهدلیل بیماری سـل | 11 | |
| 2-2: عکسبرداری توسط میکروسکوپ الکترونی از مایکوباکتریوم توبرکلوزیس | 16 | |
| 2-3: کلنیهای مایکوباکتریوم توبرکلوزیس روی محیط لونشتاین جانسون | 17 | |
| 2-4: نمای شماتیک ازساختمان دیواره مایکوباکتریوم توبرکلوزیس | 22![]() | |
| 2-5: میزان بروز مایکوباکتریوم توبرکلوزیس درنقاط مختلف جهان در سال 2012 | 40 | |
| 2-6: درخت تبارشناسی زیرسویههای مختلف BCG M. bovis بر اساس اطلاعات پراکندگی آنها و خصوصیات مولکولی | 46 | |
| 2-7: برخی از عکسهای تاریخی مربوط به کاشفان واکسن ب ث ژ | 49 | |
| 3-1: مرحله دیالیز | 84 | |
| 3-2: آمادهسازی صفحات شیشهای | 88 | |
| 4-1: باسیل اسید فست در رنگ امیزی اورامین | 93 | |
| 4-2: باسیل اسید فست در رنگ امیزی ذیل-نلسون | 94 | |
| 4-3: فاکتور طنابی (cord factor) | 95 | |
| 4-4: تفسیر تست نیترات | 95 | |
| 4-5: باندهای پروتئینهای غشایی سویههای M. bovis و M. TB ، استخراج پروتئین به روش آمونیوم سولفات، ژل 10% و رنگ آمیزی آمیزی کوماسی بلو R-250 | 99 | این مطلب را هم بخوانید : دانلود پایان نامه درباره خودمختاری و آزادی |
| 4-6: باندهای پروتئینهای غشایی سویههای M. bovis و M. TB ، استخراج پروتئین به روش آمونیوم سولفات، ژل 10% رنگ آمیزی Blue Silver Staining | 100 | |
| 4-7: باندهای پروتئینهای ترشحی سویههای M. bovis و M. TB | 101 | |
| 5-1: تصویر A سویهM. tuberculosis H37Rv و تصویرB سویه مایکوباکتریوم توبرکلوزیس حساس | 106 | |
چکیده
مایکوباکتریوم توبرکلوزیس عامل بیماری سل میباشد. از زمانی که سازمان جهانی بهداشت در سال 1993، توبرکلوزیس را به عنوان یک فوریت اعلام نمود، تا کنون کنترل آن به دلیل وجود سوشهای مقاوم به درمان و تداخل با بیماری ایدز دچار مشکل شده است. مایکوباکتریوم بوویس به عنوان عامل سل گاوی به صورت موردی انسان را نیز درگیر می کند و به عنوان یکی از معضلات بهداشتی با گستره جهانی محسوب میشود. مبارزه با این آلودگی امروزه باعث گسترش بررسی آنتیژنهای باکتری به منظور دسترسی بیومارکرهای موثر در تشخیص، اهداف دارویی و اجزای واکسن مورد اهمیت واقع شدهاند.
جهت مقایسه پروفایل پروتئینی سویههای مایکوباکتریوم توبرکلوزیس حساس به درمان و مایکوباکتریوم بوویس از کل نمونههای ارسالی 6 ماهه اول سال 1392 به بخش مایکوباکتریولوژی انسیتو پاستور، 100 نمونه مورد ارزیابی قرار گرفت. در ابتدا نمونههای کلینیکی با روش ان استیل- ال سیستئین- هیدروکسید سدیم و در محیط کشت لونشتاین جانسون کشت داده شد و جهت افتراق مایکوباکتریوم توبرکلوزیس حساس و مایکوباکتریوم بوویس از سایر مایکوباکتریومها، از تستهای بیوشیمیایی (نیترات، کاتالاز، نیاسین و TCH) و حساسیت آنتی بیوتیکی استفاده شد. کلونیها در محیط میدل بروک 7H9 کشت داده شد، پس از برداشت کلونیهای جدید، به منظور استخراج پروتئینهای ترشحی و غشایی از روشهای سونیکاسیون، رسوب دهی با سولفات آمونیوم و الکل استفاده گردید و به وسیله روش برادفورد تعیین غلظت شد و در نهایت مقایسه با روش الکتروفورز تک بعدی انجام پذیرفت.
با بررسی باندهای حاصله از پروتئینهای غشایی و ترشحی در 5 سویه کلینیکی متفاوت مایکوباکتریوم توبرکلوزیس حساس هیچگونه تفاوتی مشاهده نشد و همچنین در 5 سویه کلینیکی متفاوت مایکوباکتریوم بوویس نیز تفاوتی مشاهده نشد. در سویههای مایکوباکتریوم بوویس، برای پروتئینهای غشایی باندهایی در محدوده 15 تا 85 کیلودالتون مشاهده شد و در سویه مایکوباکتریوم توبرکلوزیس حساس نیز باندهای از 15 تا 120 کیلودالتون مشاهده شد این دو سویه در محدودههای وزنی تقریبا 30 تا 116 کیلو دالتون بسیار متفاوت بودهاند.
در بررسی پروتئینهای ترشحی در سویههای مایکوباکتریوم بوویس، باندهایی در محدوده 15 تا 115 کیلودالتون و در سویههای مایکوباکتریوم توبرکلوزیس حساس باندهایی از 18 تا 114 کیلودالتون مشاهده شدند که اختلافات وزنی کمی در این محدودهها مشاهده شد.
نتایج حاصل از تفکیک باندهای پروتئینی سویههای مایکوباکتریوم توبرکلوزیس حساس، حاکی از شباهت نسبی با سویه استانداردM. tuberculosis H37Rv نسبت به مطالعات دیگر است. اختلافات مشاهده
برای رعایت حریم خصوصی نام نگارنده پایان نامه درج نمی شود
(در فایل دانلودی نام نویسنده موجود است)
تکه هایی از متن پایان نامه به عنوان نمونه :
(ممکن است هنگام انتقال از فایل اصلی به داخل سایت بعضی متون به هم بریزد یا بعضی نمادها و اشکال درج نشود ولی در فایل دانلودی همه چیز مرتب و کامل است)
عنوان صفحه
فصل اول- مقدمه……………………………………………………………………………………………………………………………………….1
1-1- روش های کمک باروری………………………………………………………………………………………………………………….2
1-2- ناباروری……………………………………………………………………………………………………………………………………………5
1-3- تولید اسپرم …………………………………………………………………………………………………………………………………….5
1-4- مایع انزالی………………………………………………………………………………………………………………………………………..6
1-4-1- آنالیز مایع انزالی………………………………………………………………………………………………………………………….7
1-5- پارامترهای اسپرم………………………………………………………………………………………………………………………….10
1-5-1- مورفولوژی…………………………………………………………………………………………………………………………………10
1-5-2- تحرک اسپرم…………………………………………………………………………………………………………………………….12
1-5-3- درجه بندی تحرک اسپرم ……………………………………………………………………………………………………….14
1-5-4- قابلیت حیات اسپرم………………………………………………………………………………………………………………….14
1-5-5- حجم………………………………………………………………………………………………………………………………………….15
1-5-6- غلظت………………………………………………………………………………………………………………………………………..16
1-6- انواع مرگ سلولی و تعریف آن………………………………………………………………………………………………………18
1-6-1- نکروز…………………………………………………………………………………………………………………………………………18
1-6-2- آپوپتوز سلولی…………………………………………………………………………………………………………………………..18
1-6-2-1 مراحل آپوپتوز ……………………………………………………………………………………………………………………….19
1-6-2-2 مسیر های آپوپتوز………………………………………………………………………………………………………………….21
1-6-2-3- عناصر کلیدی مسیرهای آپوپتوز………………………………………………………………………………………….21
1-6-2-4- روش های بررسی آپوپتوز …………………………………………………………………………………………………..23
1-6-2-4-1- بررسی تغییرات غشاء پلاسمایی در مرگ سول ……………………………………………………………23
1-6-2-4-1-1- تعیین فسفاتیدیل سرین سطح بیرونی غشاء سلول……………………………………………………24
1-6-2-4-2- بررسی سیتوتوکسیسیتی ………………………………………………………………………………………………24
1-6-2-4-3- بررسی تغییرات مورفولوژی …………………………………………………………………………………………..25
1-6-2-4-3-1- استفاده از میکروسکوپ الکترونی………………………………………………………………………………25
1-6-2-4-3-2- استفاده از میکروسکوپ نوری وفلورسانس………………………………………………………………..25
1-7- منشاء آسیب DNA اسپرم…………………………………………………………………………………………………………26
1-7-1- بسته بندی غیرطبیعی کروماتین……………………………………………………………………………………………27
1-8- ساختار کروماتین اسپرم و تأثیر آن بر ناباروری …………………………………………………………………………28
1-8-1- بررسی ساختار کروماتین اسپرم……………………………………………………………………………………………..28
1-9- نقش آپوپتوز در آسیب DNA اسپرم………………………………………………………………………………………..29
1-10- استرس اکسیداتیو به واسطه ROS…………………………………………………………………………………………30
1-11- تاثیر عوامل محیطی برسلامت DNA و میزان موفقیت روشهای کمک باروری…………………..31
1-11-1- مصرف سیگار………………………………………………………………………………………………………………………..31
1-11-2- مواجهات شغلی…………………………………………………………………………………………………………………….32
1-11-3- داروهای شیمی درمانی و رادیوتراپی……………………………………………………………………………………33
1-11-4- سن………………………………………………………………………………………………………………………………………..33
1-12- تکنیکهای بررسی ساختار کروماتین……………………………………………………………………………………….33
1-12-1- روشهای تعیین آسیب DNA اسپرم انسان………………………………………………………………………34
1-12-1-1- تست TUNEL……………………………………………………………………………………………………………….35
1-12-1-2- روش DBD-FISH………………………………………………………………………………………………………..35
1-12-1-3- روش Comet…………………………………………………………………………………………………………………..36
1-12-1-4- رنگآمیزی CMA3…………………………………………………………………………………………………………36
1-12-1-5- تکنیک SCSA………………………………………………………………………………………………………………..37
1-12-1-6- تست SCD……………………………………………………………………………………………………………………..37
1-12-1-7- رنگآمیزی آکریدین اورانژ………………………………………………………………………………………………..39
1-12-1-8- رنگآمیزی تولوئیدین بلو………………………………………………………………………………………………….39
1-13- روش مهاجرت اسپرم………………………………………………………………………………………………………………….39
1-14- روش سانتریفیوژ شیب غلظت…………………………………………………………………………………………………….40
فصل دوم- مواد و روش ها………………………………………………………………………………………………………………………41
2-1- مواد و وسایل مورد نیاز…………………………………………………………………………………………………………………42
2-1-1- وسایل مورد نیاز………………………………………………………………………………………………………………………….42
2-1-2- مواد مورد نیاز……………………………………………………………………………………………………………………………..42
2-2- ساخت محلول های مورد نیاز…………………………………………………………………………………………………………45
2-2-1- ساخت محلول Ham’s F10…………………………………………………………………………………………………….45
2-2-2- محلول های لازم برای تست پراکندگی کروماتین اسپرم (SCD)…………………………………………..46
2-2-3- ساخت محلول تانل……………………………………………………………………………………………………………………..46
2-2-4- ساخت محلول (PBS)……………………………………………………………………………………………………………….46
2-2-5- ساخت رنگ ائوزین-نیگروزین…………………………………………………………………………………………………….47
2-2-6- ساخت رنگ رایت………………………………………………………………………………………………………………………..47
2-3- روشها………………………………………………………………………………………………………………………………………………..48
2-3-1- روش جمع آوری اسپرم…………………………………………………………………………………………………………….. 48
2-3-2- آنالیز مایع انزالی………………………………………………………………………………………………………………………… 48
2-3-2-1- آزمایشات ماکروسکوپی…………………………………………………………………………………………………………..48
2-3-2-1-1- ظاهر………………………………………………………………………………………………………………………………….48
2-3-2-1-2- آبکی کردن…………………………………………………………………………………………………………………………48
2-3-2-1-3- حجم………………………………………………………………………………………………………………………………….48
2-3-2-1-4- چسبندگی…………………………………………………………………………………………………………………………48
2-3-2-2- آزمایشات میکروسکوپی………………………………………………………………………………………………………….49
2-3-2-2-1- آگلوتیناسیون……………………………………………………………………………………………………………………..50
2-3-2-2-2- بررسی تعداد اسپرم…………………………………………………………………………………………………………..50
2-3-2-2-2-1- روش استفاده از MAKLER CHAMBER برای شمارش ………………………………………..50
2-3-2-2-3- ارزیابی تحرک……………………………………………………………………………………………………………………51
2-3-2-2-3-1- روش کار……………………………………………………………………………………………………………………….52
2-3-2-2-4- ارزیابی قابلیت حیات…………………………………………………………………………………………………………53
2-3-2-2-4-1- روش کار رنگ آمیزی ائوزین-نیگروزین………………………………………………………………………53
2-3-2-2-5- ارزیابی مورفولوژی………………………………………………………………………………………………………………54
2-3-2-2-5-1- رنگ آمیزی پاپانیکولا……………………………………………………………………………………………………54
2-3-2-2-5-2- روش فیکس کردن………………………………………………………………………………………………………..54
2-3-2-2-5-3-روش رنگ آمیزی پاپانیکولا……………………………………………………………………………………………55
2-3-3- Direct swim-up………………………………………………………………………………………………………………………57
2-3-3-1- روش کار………………………………………………………………………………………………………………………………….57
2-3-4- تست بررسی میزان پراکندگی کروماتین اسپرم (SCD)……………………………………………………………58
2-3-4-1- روش کار…………………………………………………………………………………………………………………………………58
2-3-5- روش رنگ آمیزی تانل…………………………………………………………………………………………………………………60
2-3-6- آنالیز آماری………………………………………………………………………………………………………………………………….62
فصل سوم- نتایج………………………………………………………………………………………………………………………………………..63
3-1 نتایج اثر آماده سازی اسپرم به روش Direct Swim-up برروی تحرک اسپرم………………………………64
3-2- نتایج اثر آماده سازی اسپرم به روش Direct Swim-up برروی قابلیت حیات اسپرم………………….67
3-3- نتایج اثر آماده سازی اسپرم به روش Direct Swim-up برروی مورفولوژی اسپرم……………………..68
3-4- نتایج اثر آماده سازی اسپرم به روش Direct Swim-up برروی قطعه قطعه شدن DNA اسپرم………………………………………………………………………………………………………………………………………………………….70
3-5- نتایج اثر زمان های مختلف انکوباسیون(3،2،1،0ساعت) بعد از آماده سازی اسپرم به روش Direct Swim-up برروی قطعه قطعه شدن DNA اسپرم………………………………………………………………………………….72
این مطلب را هم بخوانید :
3-6- نتایج اثر زمان های مختلف انکوباسیون(3،2،1،0ساعت) بعد از آماده سازی اسپرم به روش Direct Swim-up برروی آپوپتوز اسپرم………………………………………………………………………………………………………………75
3-7- رابطه میزان قطعه قطعه شدن DNA اسپرم با سایر پارامترهای اسپرم……………………………………78
3-8- رابطه میزان آپوپتوز اسپرم با سایر پارامترهای اسپرم…………………………………………………………………..79
3-9- رابطه میزان قطعه قطعه شدن DNA اسپرم با میزان آپوپتوز اسپرم…………………………………………..80
3-10- نتایج کلی……………………………………………………………………………………………………………………………………80
فصل چهارم- بحث………………………………………………………………………………………………………………………………….81
4-1- تا ثیر روش آماده سازی Dricct Swim up بر روی پارامترهای اسپرم………………………………………83
4-2- تاثیر زمان های مختلف انکوباسیون اسپرم در دمای 37 درجه سانتی گراد بر روی قطعه قطعه شدن DNA و آپوپتوز اسپرم…………………………………………………………………………………………………………………..84
4-3- پیشنهادات…………………………………………………………………………………………………………………………………….90
منابع
چکیده انگلیسی
فهرست شکل ها
1-1- ساختار اسپرم انسانی……………………………………………………………………………………………………………………..9
1-2- ارزیابی آسیب DNA توسط: …………..…………….…A.TUNEL, B.COMET, C.CMA337
1-3- تست SCD………………………………………………………………………………………………………………………………….38
2-1- انواع مختلف آگلوتیناسیون…………………………………………………………………………………………………………..50
2-2- MAKLER CHAMBERبرای شمارش اسپرم استفاده می شود………………………………………………51
2 -3- شکل لامل MAKLER CHAMBER …………………………………………………………………………………….52
2-4- چگونگی قرارگیری لوله فالکون بازاویه 45 درجه در انکوباتور…………………………………………………….57
3-1- رنگ آمیزی ائوزین-نیگروزین برای سنجش میزان زنده یا مرده بودن اسپرم…………………………….67
3-2- رنگ آمیزی پاپانیکولا ………………………………………………………………………………………………………………….69
3-3- تست SCD برای بررسی میزان قطعه قطعه شدن DNA اسپرم میباشد……………………………………74
3-4- رنگ آمیزی TUNEL………………………………………………………………………………………………………………….76
فهرست جدول ها
1-1 : خصوصیات میکرسکوپی نمونه انزال طبیعی مطابق با استاندارد های سازمان بهداشت جهانی (2010/WHO)…………………………………………………………………………………………………………………………………….17
2-1- ساخت Ham’sf10……………………………………………………………………………………………………………………..45
2-2- محلول های لازم برای رنگ آمیزی پاپانیکولا………………………………………………………………………………55
3-1-مقایسه پارامترهای اسپرمی قبل و بعد از آماده سازی اسپرم ……………………………………………………..71
3-2-مقایسه میانگین اثر زمان های مختلف انکوباسیون(3،2،1،0ساعت) بعد از آماده سازی اسپرم به روش Direct Swim-up برروی قطعه قطعه شدن DNA آپوپتوز اسپرم………………77
3-3-مقایسه مقدار P اثر زمان های مختلف انکوباسیون(3،2،1،0ساعت) بعد از آماده سازی اسپرم به روش Direct Swim-up برروی قطعه قطعه شدن DNA و آپوپتوز اسپرم…………………………………..77
3-4- رابطه میزان قطعه قطعه شدن DNA اسپرم با سایر پارامترهای اسپرم……………………………………78
3-5- رابطه میزان آپوپتوز اسپرم با سایر پارامترهای اسپرم………………………………………………………………….79
فهرست نمودارها
3-1- مقایسه میانگین حرکت پیشرونده، حرکت سریع و حرکت کند قبل و بعد از آماده سازی اسپرم به روش Swim-up……………………………………………………………………………………………………………………………….66
3-2- مقایسه میانگین قابلیت حیات و مورفولوژی اسپرم قبل و بعد از آماده سازی به روش Swim-up…………………………………………………………………………………………………………………………………………………………..68
3-3- مقایسه میانگین حرکت پیشرونده و قطعه قطعه شدن DNA اسپرم قبل و بعد از آماده سازی به روش Swim-up………………………………………………………………………………………………………………………………..70
3-4- مقایسه میانگین قطعه قطعه شدن DNA اسپرم در زمان های مختلف انکوباسیون بعد از آماده سازی به روش Swim-up…………………………………………………………………………………………………………………..73
3-5- مقایسه میانگین آپوپتوز اسپرم در زمان های مختلف انکوباسیون بعد از آماده سازی به روش Swim-up……………………………………………………………………………………………………………………………………………76
چکیده
یکی از علت های شکست و عدم موفقیت در تکنیک های کمک باروری(ART) قطعه قطعه شدن DNA اسپرم انسانی است، که ممکن است با انکوباسیون طولانی مدت اسپرم در دمای 37 درجه سانتی گراد به وجود آید. لذا در این مطالعه میزان قطعه قطعه شدن و آپوپتوز DNA اسپرم انسانی بعد از آماده سازی به روش Direct swim-up در زمان های مختلف انکوباسیون به وسیله تست SCD و تکنیک TUNEL مورد ارزیابی قرار گرفت.
در این مطالعه آینده نگر، بیست ویک نمونه ی اسپرم نرمال مورد مطالعه قرار گرفت. برای بررسی مورفولوژی اسپرم از رنگ آمیزی Papanicolaou و قابلیت حیات اسپرم از رنگ آمیزی Eosin-Nigrosin استفاده شد. نمونه ها در دمای 37 درجه سانتی گراد بعد از آماده سازی به روش Direct swim-up در زمان های مختلف انکوبه شدند. قطعه قطعه شدن DNA در فواصل زمانی مختلف (3،2،1،0 ساعت) با استفاده از تست SCD مورد بررسی قرار گرفت. اسپرم های دارای هاله بزرگ و متوسط، DNA سالم داشتند و اسپرم هایی که دارای هاله کوچک و بدون هاله بودند DNA قطعه قطعه شده داشتند. میزان آپوپتوز نیز به وسیله تکنیک TUNEL مورد ارزیابی قرار گرفت.
میانگین مورفولوژی نرمال و حرکت پیشرونده اسپرم بعد از آماده سازی به روش Direct swim-up 53/2±33/72 و 02/1±10/90 بوده است. میزان قطعه قطعه شدن DNA اسپرم به میزان معنی داری افزایش یافت بعد از دو ساعت (935/0±81/8، 004/0 P=) و بعد از سه ساعت (894/0±76/10، 0001/0 P=) انکوباسیون نسبت به زمان صفر (809/0±38/4) بوده است. همچنین میزان آپوپتوز DNA اسپرم در زمان دو ساعت انکوباسیون نسبت به زمان صفر (864/0±19/9، 008/0 P=) و نیز زمان سه ساعت نسبت به زمان یک ساعت ( 7/0±97/10، 002/0 P=) انکوباسیون معنی دار شده است.
در نهایت نتیجه ای که ما به آن دست یافته ایم نشان می دهد که انکوباسیون اسپرم نرمال در دمای 37 درجه سانتی گراد که به روش Direct swim-up آماده شده برای استفاده در تکنینک های کمک باروری (ART) باید زمانی کمتر از دو ساعت باشد.
واژه های کلیدی:
اسپرم نرمال، قطعه قطعه شدن DNA، انکوباسیون، تست SCD، تکنیک TUNEL.
مقدمه
3-3-1-3- دلایل استفاده از مدل تعدیل شده بازار.. 67
3-3-1-4- بازده غیر عادی.. 68
3-3-1-5- بازده غیر عادی انباشته. 69
3-3-2- درصد تغییر در سود نقدی.. 69
3-3-3- جریان نقد آزاد. 69
3-3-4- نسبت بدهی به حقوق صاحبان سهام. 71
3-3-5- نقدشوندگی.. 72
3-3-6- مالکیت نهادی.. 72
3-3-7- فرصت رشد. 73
3-4- ابزارها و روشهای جمعآوری دادهها 74
3-5- روش تجزیه و تحلیل داده ها و اطلاعات… 74
3-5- 1-رگرسیون خطی.. 74
3-5- 1-1-آزمون دوربین – واتسون.. 75
3-5- 1-2-بررسی نرمال بودن خطاها 75
3-5- 1-3- آزمون هم خطی.. 76
3-5- 1-4- راه حل های رفع هم خطی.. 76
3-5- 2- تخمین از طریق روش دادههای تلفیقی.. 77
3-5- 2-1- مزایای استفاده از دادههای تابلویی.. 78
3-5- 2-2- داده های تلفیقی متوازن و غیر متوازن.. 79
3-5- 2-3- مدل کلی دادههای تابلویی.. 79
3-5- 2-3- تخمین زن های اثرات ثابت و تصادفی.. 81
3-5- 2-5- تشخیص استفاده از روش اثرات ثابت یا اثرات تصادفی.. 85
3-5- 2-5-1- آزمون F (آزمون برابری عرض از مبداء ها). 85
3-5- 2-5-2- آزمون هاسمن: انتخاب بین اثرات ثابت یا تصادفی.. 87
3-6- جمع بندی.. 88
فصل چهارم: روش تجزیه و تحلیل دادهها. 89
4-1- مقدمه. 90
4-2- آمار توصیفی.. 90
4-2-1- متغیرهای مورد استفاده. 90
4-2-2- فراوانی شرکتهای مورد بررسی.. 91
4-2-3- آمار توصیفی هر یک از متغیرها 91
4-3-بررسی مفروضات رگرسیون.. 92
4-3-1-آزمون همخطی.. 92
4-3-2-آزمون استقلال خطاها 93
4-3-3-بررسی نرمال بودن توزیع پسماندها.. 93
4-4- آزمون فرضیات… 94
4-5- نتایج آزمون فرضیات… 95
4-5-1- آزمون فرضیه اول.. 95
4-5-2- آزمون فرضیه 2.. 96
4-5- 3-آزمون فرضیه 3 و 4.. 97
4-5-4- آزمون فرضیه 5 و 6.. 97
4-5-5- آزمون فرضیه 7 و 8.. 98
4-5-6- آزمون فرضیات 9 و 10.. 99
4-5-7- آزمون فرضیات 11 و 12.. 100
4-5-8- آزمون فرضیات 13 و 14.. 101
4-6-جمعبندی.. 101
فصل پنجم: نتیجهگیری و پیشنهادات. 103
5-1- مقدمه. 104
5-2- نتایج حاصل از بررسی سؤالها و فرضیههای پژوهشی.. 104
5-2- 1-نتایج حاصل از فرضیات اول و دوم و مقایسه نتایج با سایر تحقیقات انجام شده. 105
5-2-2- نتایج حاصل از فرضیات سوم و چهارم و مقایسه نتایج با سایر تحقیقات انجام شده. 106
5-2-3- نتایج حاصل از فرضیات پنجم و ششم و مقایسه نتایج با سایر تحقیقات انجام شده. 106
5-2-4- نتایج حاصل از فرضیات هفتم و هشتم مقایسه نتایج با سایر تحقیقات انجام شده. 107
5-2-5- نتایج حاصل از فرضیات نهم و دهم و مقایسه نتایج با سایر تحقیقات انجام شده. 107
5-2-6- نتایج حاصل از فرضیات یازدهم و دوازدهم و مقایسه نتایج با سایر تحقیقات انجام شده. 107
5-2-7-نتایج حاصل از فرضیات سیزدهم وچهاردهم و مقایسه نتایج باسایر تحقیقات انجام شده. 108
5-3-پیشنهادات کاربردی.. 108
5-4- پیشنهادات برای تحقیقات آینده. 108
پیوستها. 110
منابع. 118
فهرست شکلها
عنوان
این مطلب را هم بخوانید :
روش انتقال اعتبار بین سیم کارتهای رایتل - مرکز آموزش علمی-کاربردی کاویان
صفحه
شکل2 -1- فرآیند پرداخت سود سهام. 20
شکل 2-2- مکاتب فکری در تقسیم سود. 22
شکل 2-3- روابط نمایندگی. 42
شکل 3-1- نمایش مراحل کلی انجام پژوهش. 64
فهرست جدولها
عنوان صفحه
جدول 4-1- تعریف متغیرهای تحقیق. 90
جدول4-2- فراوانی شرکتهای مورد بررسی در هر یک از فرضیات 91
جدول 4-3- آمار توصیفی هر یک از متغیرها. 91
جدول 4-4- بررسی استقلال متغیرهای تحقیق. 92
جدول 4-5- آزمون استقلال خطاها. 93
جدول 4-6- ارزش زمان. 95
جدول 4-7- خلاصه نتایج حاصل از آزمون فرضیه 1. 95
جدول 4-8- خلاصه نتایج حاصل از آزمون فرضیه 2. 96
جدول 4-9- خلاصه نتایج حاصل از آزمون فرضیههای 3 و 4. 97